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糧食、油料中粗蛋白含量測定方法
2018-09-17 16:46:57
admin
1835
1.目的 測定糧食、油料中粗蛋白的含量
2.范圍 含氮量0.02%-95%之間的糧食、油料
3.定義 無
4.職責 檢驗員負責檢驗工作的執(zhí)行
5.作業(yè)辦法
5.1 ST-08C定氮儀測定法
5.1.1工作原理
ST-08C定氮儀是由消化爐與定氮儀蒸餾器組成。將試樣置入消化管插入井式加熱爐內(nèi)加熱取得最佳的熱效應,在消化之前置入催化劑進一步加速消化煮解,大大縮短消化時間。消化管內(nèi)溢出的SO2等有害氣體,通過消化管上的排污管經(jīng)抽氣三通由下水道帶入下水道,有效的抑制了有害氣體的外溢,試樣經(jīng)40分鐘左右消化煮解,即可完全消化盡。
5.1.2技術(shù)參數(shù)
5.1.2.1測定樣品量:固體<5g/個,液體<15ml/個
5.1.2.2工作電壓:220V,50HZ
5.1.2.3電耗:蒸餾器800W、消化爐(四孔1200W)(八孔2400W)
5.1.3操作方法
5.1.3.1試劑準備
5.1.3.1.1濃硫酸混合液 在100mL水中緩緩加入濃硫酸200mL,冷卻后加入30%過氧化氫300mL,混合均勻。
5.1.3.1.2混合催化劑 硫酸銅10g、硫酸鉀100g、硒粉0.2g,在研缽中研細過孔徑0.45mm(40目篩),混勻備用。
5.1.3.1.3 混合指示劑 2份甲基紅乙醇溶液(稱取0.1g甲基紅置于研缽中加入少許95%乙醇,研磨溶解后,加入75mL95%乙醇)與1份次甲基藍乙醇溶液(0.1g次甲基藍溶于80mL95%乙醇中)臨用時混合?;蚴褂糜?.2%甲基紅乙醇溶液1份和0.2%溴甲酚綠乙醇溶液5份配置的混合指示劑,終點為灰紅色。
5.1.3.1.4 20g/L硼酸溶液 稱取20g硼酸溶解在1000mL水中。
5.1.3.1.5 400g/L氫氧化鈉溶液 稱取40g氫氧化鈉溶于100mL水中。
5.1.3.1.6 0.01mol/L鹽酸溶液
5.1.3.1.6.1配置
先配置0.1mol/L鹽酸,量取9mL濃鹽酸,加水定容至1000mL。再配置0.01mol/L鹽酸標準溶液,量取已配置的0.1mol/L鹽酸100ml加水定容至1000mL。
5.1.3.1.6.2 0.1mol/L鹽酸標準溶液的滴定
稱取0.2g于270℃-300℃灼燒至恒重的工作基準試劑無水碳酸鈉,溶于50mL水中,加10滴溴甲酚綠-甲基紅混合指示液,用配置好的鹽酸溶液滴定至溶液由綠色變?yōu)榘导t色,煮沸2min,冷卻后繼續(xù)滴定至溶液再呈暗紅色。同時做空白試驗。
5.1.3.1.6.3 計算
C(HCL)= 1000×m(V1-V2)×52.994
式中 C(HCL)——鹽酸標準溶液的物質(zhì)的量濃度,mol/L;
m——無水碳酸鈉的質(zhì)量,g
V1——鹽酸溶液的用量,mL
V2——空白試驗鹽酸溶液的用量,m;
M——無水碳酸鈉的摩爾質(zhì)量,其值為M(1/2Na2CO3)=52.994g/mol。
5.1.3.2樣品消化
稱取經(jīng)粉碎通過40-60目的樣品0.5-1.0g用蠟光紙卷著倒入已洗滌烘干的消化管中加催化劑5g左右和10mL左右硫酸。將消化管分別放入消化架各個孔內(nèi),然后置于消化爐上,然后開啟抽氣三通接上自來水龍頭,使抽氣三通處于吸氣狀態(tài),接通電源,在加熱初始階段注意防止樣品飛濺。消化爐溫度起先控制在200度左右,20分鐘后可以再設(shè)定至450度以上。
消化終點是以消化液的顏色來判定的,當消化液呈淺藍綠色的透明狀時,再繼續(xù)加熱沸騰10分鐘,然后結(jié)束消化過程。
5.1.3.3 蒸餾
5.1.3.3.1蒸餾器中,堿液及蒸餾水采用電磁泵加入,NaOH、H2O注入接口用橡膠管套入后分別置入自備的容器中,加液時按面板上相應開關(guān),液體由泵吸入消化管內(nèi),注入毫升數(shù)視標尺所注位置而定。(一般堿液加量是消化時硫酸用量的5倍以上,加蒸餾水量15毫升左右)。
5.1.3.3.2 打開電源,打開自來水龍頭,接冷卻水,自來水龍頭不必開過大,出水口有水流出即可,用排水管子上的夾子夾緊排水管子。打開面板上右邊蒸氣開關(guān),手柄往上推為開蒸氣,同時把左邊的進水開關(guān)手柄往上推為開,待電流表指針指在2A-3A時馬上把左邊進水開關(guān)手柄往下壓,壓到底壓不下為關(guān)(如果水進入側(cè)面蒸發(fā)爐慢,電流表長時間沒反應,用吸耳球往正面的細長管內(nèi)吹幾下,以排除管內(nèi)空氣),待蒸氣管噴出氣后又上推打開左進水開關(guān)供水,1分鐘左右電流穩(wěn)定在3.5A-6A左右后,關(guān)閉右蒸氣開關(guān),手柄往下壓到底。因為紅色進水開關(guān)是控制機器內(nèi)部產(chǎn)生蒸氣的水源開關(guān),從側(cè)面的有機玻璃窗口可以看到蒸發(fā)爐水位的高低,防止水位過高,因為一開始水沒有沸騰,水不斷進入,容易使電流過大而燒壞保險絲。蒸氣開關(guān)是起通斷蒸氣作用,也是水源進入蒸發(fā)爐和排除蒸發(fā)爐水的排水器件。(如果蒸氣出來后電流不大,開關(guān)一下紅色蒸氣開關(guān)會正常。
5.1.3.3.3 在250mL三角接受瓶中加入50mL2%H3BO3和2-3滴混合指示劑,蒸餾時間設(shè)定6-8分鐘,并使接受瓶托架盤往上移,使滴定管浸沒在液體中,然后按時控開關(guān)。
5.1.3.3.4 向上扳動側(cè)面紅球手柄把消化管固定在左邊托架上,然后按面板上開關(guān)分別加入H2O、NaOH液體,然后上推蒸氣開關(guān),向試管內(nèi)注入蒸氣,進行蒸餾樣品,在接受瓶內(nèi)接受液達150mL左右時移下接受瓶,用蒸餾水沖洗滴管口繼續(xù)蒸餾半分鐘,然后取下接受瓶,待滴定用,關(guān)蒸氣開關(guān),第二個樣品只要放上后,加好液,上推蒸氣開關(guān)即可,不要關(guān)電源。
5.1.3.4滴定
用0.1mol/L鹽酸標準溶液滴定接收瓶內(nèi)的溶液,滴定溶液由綠色變?yōu)榈仙珪r為止,記下消耗鹽酸的毫升數(shù),按下式計算蛋白含量:
蛋白含量(%)=(V-V0)×N×0.014×A×100/W
式中:V——消耗的鹽酸的毫升數(shù)
V0——空白試驗時消耗鹽酸毫升數(shù)
N——鹽酸的當量濃度
0.014——1mL鹽酸的克當量數(shù)
A——固定系數(shù)(6.25、5.7、5.3)
W——試樣重量,g
5.1.3.5關(guān)機
關(guān)電源、關(guān)水龍頭、打開排水夾子,兩紅球開關(guān)上推,取下消化管,擦干機器。
5.1.4注意事項
5.1.4.1 消化時如氣體外逸,加大自來水壓力。小花圈每次試驗結(jié)束后清洗一遍延長使用壽命。堿泵每次工作完后把氫氧化鈉溶液外接皮管移入蒸餾水瓶內(nèi),前面套好消化管抽洗幾次,防止堿濃度過高,殘留在堿泵內(nèi)而影響壽命年工也可防止單向閥閥芯粘連。待下次使用時,在蒸餾時須排出100mLNaOH,以防止第一個樣品NaOH濃度不夠。過一段時間用稀酸清洗一下蒸發(fā)爐并用清水洗幾次,保養(yǎng)電極。
5.1.4.2 如果操作不當,15A保險絲燒斷后,請拔去電源插頭,換上新的后,關(guān)水龍頭,打開排水夾子排盡蒸發(fā)爐內(nèi)的水,按照開機步驟重新開機操作。
5.2 凱式定氮測定法
5.2.1儀器和用具
5.2.1.1 凱氏燒瓶:50ml;
5.2.1.2 圓底燒瓶:100ml;
5.2.1.3 萬用電爐;
5.2.1.4 錐形燒瓶:100ml;
5.2.1.5 微量滴定管:5ml、刻度0.01ml;
5.2.1.6 容量瓶:50ml;
5.2.1.7 移液管:5ml;
5.2.1.8 量筒:10ml;
5.2.1.9 洗耳球;
5.2.2 試劑 同上
5.2.3 操作方法
5.2.3.1 消化
稱取經(jīng)粉碎通過40-60目的樣品0.2~0.3g(W,精確到0.0001g),用蠟光紙卷著倒入洗凈烘干的50ml凱氏燒瓶中,加混合指示劑1g,同時加入硫酸-過氧化氫-水混合液3~5ml,稍加振搖,斜置于電爐上,在通風櫥內(nèi)加熱進行消化。開始時用低溫加熱,勿使瓶中泡沫超過瓶肚的三分之二,待泡沫減少和煙霧變白后再增加溫度保持微沸。消化到溶液呈淺藍綠色的透明狀時,再繼續(xù)加熱沸騰10min,取出待消化液冷卻至室溫后,加水10~20ml,再待溶液溫度降到室溫后,干凈地轉(zhuǎn)入50ml容量瓶中,加水稀釋至刻度,混勻備用。同時做空白實驗。
5.2.3.2 蒸餾
在燒瓶內(nèi)加水400ml和少量沸石,加5滴混合指示劑,加幾滴酸液使水呈紫紅色,連接蒸餾裝置,并檢查有無漏氣處。
量取30ml1%硼酸溶液注入錐形瓶內(nèi),加混合指示劑2滴,使冷凝管下端插入液面下1cm處。量取稀釋的消化液5ml,由漏斗注入蒸餾瓶內(nèi),再加水10ml,沖洗加液漏斗。量取40%氫氧化鈉溶液1ml,提起活塞注入蒸餾瓶內(nèi),立即用水2~5ml沖洗漏斗,旋緊活塞。這時蒸餾瓶內(nèi)溶液總體積不要超過其容量的一半。
打開簧夾,關(guān)閉活塞,加熱燒瓶,待蒸餾瓶內(nèi)溶液開始沸騰時開始計時,經(jīng)2min降低錐形瓶,使冷凝管下端露出液面,再蒸餾1min后,用水沖洗管下端。
蒸餾結(jié)束后,掐緊簧夾,斷絕蒸氣,使蒸餾瓶內(nèi)溶液全部吸入回流管中,放松簧夾,從漏斗加入蒸餾水40~50ml,再通蒸氣加熱和回流,將蒸餾瓶洗滌一次備用。
5.2.3.3 滴定
用0.01 mol/L鹽酸溶液滴定錐形瓶內(nèi)的吸收液,滴定溶液出現(xiàn)淺紫紅色為止。同時做空白實驗。
5.2.4 結(jié)果計算
粗蛋白質(zhì)的干基含量按下列公式計算:
粗蛋白質(zhì)(干基%)= (V1-V0)×N×14×P×50v ×10000W(100-M)
式中:V——蒸餾時取用稀釋的消化液體積,ml;
V1——實驗用去的鹽酸溶液體積,ml; 1
V0——空白試驗用去的鹽酸溶液體積,ml;
N——鹽酸溶液的當量濃度,N;
14——每毫克當量鹽酸相當于氮的毫克數(shù);
P——蛋白質(zhì)換算系數(shù)(小麥5.7,其他谷物及豆類6.25);
W——試樣重量,mg;
M——試樣水分百分率,%。
5.2.5 注意事項
5.2.5.1 消化過程中若硫酸損失過多,可酌情補加硫酸,勿使消化瓶內(nèi)干涸。
5.2.5.2 加入蒸餾瓶內(nèi)的堿液必須過量。
5.2.5.3 消化液加水稀釋后,應及時進行蒸餾。
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